Esta línea intenta contribuir a la comprensión de las bases moleculares de la espermatogénesis en los mamíferos, así como de su disfunción en procesos patológicos. Hacemos especial énfasis en la profase de la primera división meiótica, durante la cual tienen lugar el apareamiento y recombinación homólogas, y cuya alteración suele desencadenar infertilidad y/o cáncer testicular. Entre nuestros principales temas de investigación, destacamos: 1) Estudios del transcriptoma codificante y no codificante a lo largo de las diferentes etapas de la espermatogénesis, incluyendo caracterización del procesamiento alternativo, generación de variantes específicas del testículo, etc. 2) Identificación y caracterización de secuencias de ácidos nucleicos participantes en el reconocimiento y apareamiento de cromosomas homólogos durante la profase meiótica. 3) Estudio del rol de ARNs no codificantes largos (lncRNAs) en procesos regulatorios durante la espermatogénesis. 4) Caracterización de genes y proteínas de expresión diferencial durante la espermatogénesis, así como de su función normal y posible vinculación con patologías (por ejemplo, a través de la generación de ratones mutantes CRISPR/Cas). 5) Mutaciones en componentes meióticos y su vinculación con la infertilidad humana, de modo de contribuir a la caracterización de la etiología molecular de determinadas patologías que producen infertilidad. 6) Estudios de la organización y ensamblado del complejo sinaptonémico (principal estructura que media el apareamiento y recombinación durante la profase meiótica), así como su alteración en modelos de ratones con patologías, mediante técnicas de superresolución.
Integrantes
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Profesora Adjunta de Bioquímica
Responsable. geisinger@fcien.edu.uy
Publicaciones
Capoano CA, Ortiz-Laquintana LA, Rodríguez-Casuriaga R, Schlapp G, Meikle MN, Mulet AP, Crispo M, Benavente R, Geisinger A (2021). SPATS1 (Spermatogenesis-associated, serine-rich 1) is not essential for spermatogenesis and fertility in mouse. PLOS ONE 16(5): e0251028. doi: 10.1371/journal.pone.0251028.
Geisinger A, Rodríguez-Casuriaga R, Benavente R (2021). Transcriptomics of meiosis in the male mouse. Frontiers Cell Dev Biol 9:626020. doi: 10.3389/fcell.2021.626020.
Rodríguez-Casuriaga R, Geisinger A (2021). Contributions of flow cytometry to the molecular study of spermatogenesis in mammals. Int J Mol Sci 22(3):1151. doi: 10.3390/ijms22031151.
Hernández D, Geisinger A, Trovero MF, Santiñaque FF, Brauer M, Folle GA, Benavente R, Rodríguez-Casuriaga R (2020). Familial primary ovarian failure associated with a SYCE1 point mutation: Defective meiosis elucidated in humanized mice. Mol Hum Reprod 26:7, 485-497. doi: 10.1093/molehr/gaaa032.
Trovero MF, Rodríguez-Casuriaga R, Romeo C, Santiñaque FF, François M, Folle GA, Benavente R, Sotelo-Silveira JR, Geisinger A (2020). Revealing stage-specific expression patterns of long noncoding RNAs along mouse spermatogenesis. RNA Biol 17:3, 350-365, doi: 10.1080/15476286.2019.1700332 *Autora para correspondencia.
Trovero MF, Geisinger A (2019). Long non-coding RNAs and their involvement in testicular pathologies. AnFaMed 6(1):12-29. doi:10.25184/anfamed2019v6n1a8.
Geisinger A, Rodríguez-Casuriaga R. Flow cytometry for the isolation and characterization of rodent meiocytes (2017). Methods Molec Biol 1471:217-230. doi: 10.1007/978-1-4939-6340-9.
da Cruz I, Rodríguez-Casuriaga R, Santiñaque FF, Farías J, Curti G, Capoano CA, Folle GA. Benavente R, Sotelo-Silveira JR, Geisinger A (2016). Transcriptome analysis of highly purified mouse spermatogenic cell populations: gene expression signatures switch from meiotic-to-postmeiotic-related processes at pachytene stage. BMC Genomics 17:294. doi: 10.1186/s12864-016-2618-1.
Geisinger A, Benavente R (2016). Mutations in genes coding for synaptonemal complex proteins and their impact on human fertility. Cytogenet Genome Res 150: 77-85. doi: 10.1159/000453344.
Goldman A, Rodríguez Casuriaga R, González-López E, Capoano CA, Santiñaque F, Geisinger, A* (2015). MTCH2 is differentially expressed in rat testis and mainly related to apoptosis of spermatocytes. Cell Tissue Res 361: 869-883. doi: 10.1007/s00441-015-2163-2.
Geisinger A, Rodríguez-Casuriaga R, Santiñaque FF, Folle GA (2014). Revisiting testicular cell suspensions and meiocytes sorting. Cytometry A. 2014 85(12):989-990. doi: 10.1002/cyto.a.22525..
Rodríguez-Casuriaga R, Santiñaque FF, Folle GA, Souza E, López-Carro B, Geisinger A (2014). Rapid preparation of rodent testicular cell suspensions and spermatogenic stages purification by flow cytometry using a novel blue-laser-excitable vital dye. MethodsX 1:239-243. doi: 10.1016/j.mex.2014.10.002.
Goldman A, Capoano CA, González-López E, Geisinger A (2014). Identifier (ID) elements are not preferentially located to brain-specific genes: high ID element representation in other tissue-specific- and housekeeping genes of the rat. Gene 533:72-77. doi: 10.1016/j.gene.2013.10.002.
Rodríguez-Casuriaga R, Folle, GR, Santiñaque F, López B., Geisinger A. (2013). Simple and Efficient Technique for the Preparation of Testicular Cell Suspensions. J. Vis. Exp. 78, e50102, doi:10.3791/50102.
Rodríguez-Casuriaga R., Geisinger A., Santiñaque F, López B, Folle G. (2011). High-purity flow sorting of early meiocytes based on DNA analysis of guinea pig spermatogenic cells. Cytometry, Part A 79A:625-634. doi: 10.1002/cyto.a.21067.
Rodríguez-Casuriaga R, Geisinger A, Santiñaque F, López, B, Folle G. (2011). Finally: Highly Pure Mammalian Early Spermatocyte Populations. Cytometry, Part A 79A. doi: 10.1002/cyto.a.21115.
Capoano A, Wettstein R, Kun A, Geisinger A (2010). Spats1 (Srsp1) is differentially expressed during testis development of the rat. Gene Expr Patt 10: 1-8. ISSN/ISBN: 1567-133X. doi: 10.1016/j.gep.2009.11.006.
Geisinger A; Rodríguez-Casuriaga R (2010). Flow cytometry for gene expression studies in mammalian spermatogenesis. Cytogenet Genome Res 128:46-56. ISSN/ISBN: 1424-8581. doi: 10.1159/000291489.
Rodríguez-Casuriaga R, Geisinger A, López-Carro B, Porro V, Wettstein R, Folle GA (2009). Ultra-fast and optimized method for the preparation of rodent testicular cells for flow cytometric analysis. Biol Proced Online 11(1): 184-195. doi:10.1007/s12575-009-9003-2.